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小鼠結腸癌細胞帶熒光素酶

T25

結腸

上皮樣

HIV-1、 HBV、HCV、支原體、細菌、酵母和真菌檢測陰性。

CT26 是以N-nitroso-N-methylurethane-(NNMU)誘導形成的未分化結腸癌細胞株。 它克隆形成的細胞株命名為CT26.WT (ATCC CRL-2638)。 用包含編碼典型腫瘤相關抗原(TAA) beta-半乳糖苷酶(beta-gal)的lacZ基因的逆轉錄病毒載體LXSN穩定轉染CT26.WT，得到致死的亞克隆CT26.CL25 (ATCC CRL-2639)。 即使CT26.CL25表達了典型的TAA beta-半乳糖苷酶，在正常小鼠中CT26.CL25 和 CT26.WT的生長率與致死率也保持基本一致。 與CT26.CL25 (ATCC CRL-2639)一起可用作測試免疫治療程序的模型，并用于研究宿主免疫反應。 2001年七月提交到ATCC的培養物污染了支原體。 其后代通過BM 細胞周期蛋白處理21天消除支原體。 處理后六周，用Hoechst染色、PCR和標準培養測試進行支原體檢測。 結果都呈陰性。

1640+10%FBS

1:2傳代

貼壁生長

無血清細胞凍存液

如果細胞密度達80%-90%，即可進行傳代培養。1. 棄去培養上清，用不含鈣、鎂離子的PBS潤洗細胞1-2次。2. 加2ml消化液（0.25%Trypsin-0.53mM EDTA）于培養瓶中，置于37℃培養箱中消化1-2分鐘，然后在顯微鏡下觀察細胞消化情況，若細胞大部分變圓并脫落，迅速拿回操作臺，輕敲幾下培養瓶后加少量培養基終止消化。3. 按6-8ml/瓶補加培養基，輕輕打勻后吸出，在1000RPM條件下離心4分鐘，棄去上清液，補加1-2mL培養液后吹勻。4. 將細胞懸液按1：2到1：5的比例分到新的含8ml培養基的新皿中或者瓶中。

將含有1mL細胞懸液的凍存管在37℃水浴中迅速搖晃解凍，加入4mL培養基混合均勻。在1000RPM條件下離心4分鐘，棄去上清液，補加1-2mL培養基后吹勻。然后將所有細胞懸液加入培養瓶中培養過夜（或將細胞懸液加入10cm皿中，加入約8ml培養基，培養過夜）。第二天換液并檢查細胞密度。

待細胞生長狀態良好時，可進行細胞凍存。下面T25瓶為例；1．細胞凍存時，棄去培養基后，PBS清洗瓶底1-2次后加入1ml胰酶，細胞變圓脫落后，加入2ml完全培養基終止消化，可使用血球計數板計數。2．1000RPM離心5分鐘去掉上清。用血清重懸浮，加DMSO至最終濃度為10%。加入DMSO后迅速混勻，按每1ml的數量分配到凍存管中，注意凍存管做好標識。本公司按每個凍存管細胞數目大于1X106個細胞凍存。3．將凍存管置于程序降溫盒中，放入-80度冰箱，至少2個小時以后轉入液氮灌儲存。記錄凍存管位置以便下次拿取。